Подготовку инструментов к стерилизации . Предстерилизационной подготовка - тщательную механическую очистку инструментария.

Порядок предстерилизационной подготовки инструментария:

· дезинфекция;

· промывание под проточной водой в течение 30 с;

· замачивание в смеси из водорода пероксида и моющего средства 50°С на 15 мин;

· мытье в моечно-пероксидной смеси с помощью ватно-марлевого тампона в течение 30 с;

· полоскание дистиллированной водой;

· просушка;

· пробы на качество предстерилизацийнои подготовки (на наличие моющих средств - фенолфталеиновой на наличие остатков крови и жира - бензидиновая проба).

Укладка и подготовка инструментария к стерилизации. После предварительного просушивания на воздухе инструментарий вкладывают в сухожаровой шкаф, который нагревают до 80°С при открытой дверце. После этого дверь закрывают и начинается стерилизация.

Стерилизация. Металлический инструментарий и стеклянную посуду стерилизуют в сухожаровых шкафах-стерилизаторах. После закрытия дверей температуру в шкафу доводят до 180°С и поддерживают ее автоматически в течение 60 мин, затем выключают.

Стерилизацию инструментария с пластмассовыми деталями можно проводить в паровом стерилизаторе (автоклаве), положив его в бокс. Стерилизация длится 20 мин при 2 атм. при температуре 132,9°С. началом стерилизации считают с момента достижения соответствующего давления. Резиновые перчатки, резиновые дренажные трубки стерилизуют при 1,1 атм. при температуре 120°С в течение 45 мин.

Режущие инструменты обертывают двумя слоями специальной бумаги и стерилизуют сухожаровым методом. Но режущие инструменты при стерилизации высокой температурой постепенно теряют свои свойства, так как металл становится более «мягким» и инструменты быстро затупляются. Поэтому их после достерилизацийного обработки целесообразнее стерилизовать «холодными» методами, чаще всего замачивают в растворах антисептиков: 96°-70° спирта - на 2 часа, 6% раствор перекиси водорода при температуре 18° С – на 6 часов, раствора дезоксон-1 – на 45 мин, раствора препарата «Сайдекс» в течение 60 мин. По истечении времени стерилизации инструменты хранятся в этих растворах к практическому использованию.

Инструменты и предметы, которые не подлежат термической обработке (эндоскопы, торакоскопы, лапароскопы, аппараты или блоки аппаратов для искусственного кровообращения, гемосорбции), стерилизуют в специальном газовом стерилизаторе. Предметы вкладывают в герметичную стерилизационную камеру, которую наполняют оксидом этилена. Срок экспозиции – 16 часов при температуре 18°С. Стерилизацию можно проводить смесью оксида этилена и бромистого метилена при температуре 55°С в течение 6 часов.

Стерилизацию инструментария и аппаратов химическими средствами следует проводить в металлических или пластиковых коробках с плотными крышками предотвращает испарение препаратов.

Хранения стерильных материалов . Стерильные материал хранят в специальном помещении. Не допускается хранение в одном помещении нестерильных и стерильных материалов. Стерильность материалов в биксах (если они не открывались) сохраняется в течение 48 часов, а при дополнительной упаковки в хлопчатобумажный мешок - 72 часа.

Лучшим в плане асептики следует считать применение инструментов одноразового использования (шприцы, скальпели, системы для в/венных вливаний, некоторые сшивающие аппараты и др.), которые стерилизуются на предприятиях медицинской промышленности различными методами, в том числе γ-облучением и ультразвуком.

Приготовление моющих и дезинфицирующих растворов. Современные дезинфицирующие средства используют для дезинфекции и уборки; сочетание дезинфекции и предстерилизационной обработки инструментария, гибких и жестких фиброскопов; дезинфекции лабораторной посуды.

· Корзолекс плюс (только для инструментария): 30 мл на 1 л (3% раствор).

· Корзолекс Базик (только для инструментария): 20 мл на 1 л (2% раствор).

· Дезактин:2 г на 1 л - для текущей уборки (0,2% раствор), 10 г на 1 л - для генеральной уборки (1% раствор).

· Хлорантоин: 2 г на 1 л - для текущей уборки (0,2% раствор), 10 г на 1 л - для генеральной уборки (1% раствор).

· Дезэффект: 23 мл на 1 л - для текущей уборки (2,3% раствор), 38 мл на 1 л - для генеральной уборки (3,8% раствор).

· Максисан: 1,7 мл на 1 л - для текущей уборки (0,17% раствор), 2,5 мл на 1 л - для генеральной уборки (0,25% раствор).

· Септодор-форте: 0,25 мл на 1 л - для текущей уборки (0,025% раствор), 2 мл на 1 л - для генеральной уборки (0,2% раствор).

· Корзолекс экстра: 15 мл на 1 л - для текущей уборки (1,5% раствор), 2 мл на 1 л - для генеральной уборки (2% раствор).

· Бацилоцид расант: 2,5 мл на 1 л - для текущей уборки (0,25% раствор), 5 мл на 1 л - для генеральной уборки (0,5% раствор).

· Бланидас: 2 г на 1 л - для текущей уборки (0,2% раствор), 10 г на 1 л - для генеральной уборки (1% раствор).

Гемотрансфузиология.

1. Пробы на совместимость при переливании крови. Техника и способы переливания крови.

ПРОБА НА СОВМЕСТИМОСТЬ ПО ГРУППАМ КРОВИ СИСТЕМЫ «АВО»

Проба на совместимость по группам крови «АВО» производится на плоскости, при комнатной температуре. На пластинку накапать 2-3 капли сыворотки больного и туда же добавить маленькую каплю эритромассы донора так, чтобы соотношение крови и сыворотки было приблизительно 1:10. Кровь размешать с сывороткой сухой стеклянной палочкой, пластинку слегка покачать, затем на 1-2 минуты оставить в покое и снова периодически покачивать, одновременно наблюдая за ходом реакции в течение 5 минут. Если в смеси сыворотки больного и крови донора наступила агглютинация эритроцитов – агглютинаты видны сначала в виде мелких, затем крупных комочков на фоне полностью или почти полностью обесцвеченной сыворотки – это значит, что кровь донора несовместима с кровью больного и не должна быть ему перелита. Если смесь крови донора и сыворотки больного по истечении 5 минут остается гомогенно окрашенной, без признаков агглютинации, то это означает, что кровь донора совместима с кровью больного в отношении групп крови системы «АВО».

ПРОБА НА СОВМЕСТИМОСТЬ ПО СИСТЕМЕ РЕЗУС С ПРИМЕНЕНИЕМ 33% РАСТВОРА ПОЛИГЛЮКИНА

Проба проводится в пробирке без подогрева. Для пробы применяется 33% раствор полиглюкина. Для исследования использовать центрифужную пробирку емкостью не менее 10 мл. На дно пробирки пипеткой внести 2 капли сыворотки больного, одну каплю донорской крови, одну каплю 33% раствора полиглюкина и перемешать содержимое путем однократного встряхивания. Пробирку медленно вращать в течение 5 минут, не выпуская ее из рук и не оставляя без движения. Через 5 минут в пробирку долить изотонический раствор NаСl в таком количестве (от 3 мл). Перемешать содержимое путем 2-3-х кратного перевертывания пробирки. Если в пробирке наблюдается агглютинация эритроцитов в виде взвеси мелких или крупных комочков, иногда хлопьевидной формы на фоне просветленной или полностью обесцвеченной жидкости, это значит, что эритроциты донора несовместимы с сывороткой больного и не должны быть ему перелиты. Если содержимое пробирки остается равномерно окрашенным и в нем не наблюдается признаков агглютинации эритроцитов, это значит, что эритроциты донора совместимы с сывороткой больного в отношении системы Резус.

ПРОБА НА БИОЛОГИЧЕСКУЮ СОВМЕСТИМОСТЬ

Перед переливанием контейнер с эритроцитарной массой, плазмой выдерживают после взятия из холодильника при комнатной температуре в течение 30-40 минут, а в экстренных случаях подогревают до температуры +37⁰С в водяной бане (под контролем термометра!). Биологическую пробу производят независимо от скорости и пути введения — струйно или капельно — следующим образом. Струйно переливают 10-15 мл эритроцитарной массы, её взвеси, плазмы, а затем в течение 3 минут наблюдают за состоянием больного. При отсутствии клинических проявлений реакций или осложнений (учащения пульса, дыхания, появления одышки, затрудненного дыхания, гиперемии лица, болей за грудиной и в пояснице и т. д.) вновь струйно вводят 10 – 15 мл эритроцитарной массы, её взвеси, плазмы и в течение 3 минут снова наблюдают за больным. После чего такую процедуру производят и в третий раз. Отсутствие реакций у больного после 3-х кратной проверки является основанием для продолжения трансфузии.

Проба Бакстера

Для оценки результатов биологической пробы, установления причины кровоточивости тканей у больных находящихся под наркозом, без сознания, а также, если пациент глухонемой или психически неполноценен, проводится проба Бакстера (проба на гемолиз). Для этого после струйного переливания 30-45 мл эритромассы из вены больного берут 5-10 мл крови и центрифугируют. Естественная окраска сыворотки (соломенного или слегка желтого цвета) крови в пробирке указывает на отсутствие внутрисосудистого гемолиза эритроцитов. Розовый цвет сыворотки указывает на гемолиз эритроцитов.

Техника переливания компонентов крови.

Оценка пригодности гемотрансфузионной среды для переливания

1. Врач должен убедиться в пригодности для переливания трансфузионной среды. Для этого удостовериться в правильности обозначения группы крови и резус-принадлежности, а так же идентичности группы крови донора и реципиента.

Провести визуальный контроль контейнера с компонентом крови. Проверить герметичность упаковки, правильность паспортизации, наличия номера, даты заготовки, обозначения группы крови, резус принадлежности, наименование консерванта, Ф.И.О. донора, наименование учреждения-заготовителя, наличие подписи врача. Макроскопически компоненты крови не должны содержать сгустков и признаков гемолиза, а так же признаков бактериального загрязнения.

Критерием годности крови и её компонентов для переливания являются: прозрачность плазмы, отсутствие в ней мути, хлопьев, нитей фибрина, гемолиза, наличие чёткой границы между глобулярной массой и плазмой. Категорически недопустимо переливание компонентов из одного контейнера нескольким больным. После переливания контейнер с остатками трансфузионной среды (10 – 15 мл) хранится герметично и стерильно укупоренным в течение 5 суток в холодильнике при +4 – +60С. На этикетке контейнера должна быть фамилия и инициалы реципиента, дата переливания. Вместе с остатками трансфузионной среды хранится пробирка с кровью реципиента, с которой проводились контрольные исследования перед гемотрансфузией.

Способы переливания крови.

В настоящее время применяются следующие основные способы гемотрансфузий:

1) Непрямое переливание эритроцитарной массы (взвеси). 

2) Прямое (непосредственное) переливание донорской крови. Это резервный метод гемотрансфузионной терапии. Он может быть применен при исключительных случаях в экстренной ситуации, когда нет под рукой ни консервированных гемотрансфузионных сред, ни консервантов.

3) Аутогемотрансфузия — это переливание собственной крови больного, заблаговременно взятой у него, например, перед операцией.

4) Реинфузия крови, излившейся при травмах и заболеваниях в закрытые внутренние полости (например, в брюшную полость при нарушенной трубной беременности), или реинфузия крови, излившейся в операционную рану при хирургических вмешательствах. Проведение реинфузии крови требует соблюдения ряда правил и условий (отсутствие бактериального загрязнения и выраженного гемолиза излившейся крови, длительность ее пребывания в полости не более 12 часов, атравматичный сбор крови, ее стабилизация гемоконсервантами и небольшими дозами гепарина, разведение при переливании изотоническими растворами минимум 1:1, переливание через системы с микрофильтром, обеспечение интенсивного диуреза и пр.).

5) Обменное переливание крови. Этот метод гемотрансфузии имеет в настоящее время очень ограниченное применение (например, при тяжелых отравлениях метгемоглобинобразующими ядами).

6) Переливание трупной (фибринолизной) крови. Метод организационно очень сложен, дорогостоящ и имеет чисто историческое значение. Заготовляют трупную кровь от внезапно умерших здоровых лиц не позднее 6 часов после смерти. Трупная кровь используется и для фракционирования на компоненты (эритроциты, плазму, альбумин и пр.).

7) Переливание модифицированной крови (гипероксигенированной, облученной ультрафиолетом, рентгеном, лазером). Наиболее часто, по специальным показаниям, (чаще в отделениях хирургической инфекции) применяется аутокровь, фотомодифицированная ультрафиолетовыми лучами.

2. Осложнения при переливании компонентов крови. Профилактика СПИДа и вирусного гепатита при переливании компонентов крови.